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紅肉火龍果采后品質(zhì)劣變及蘋(píng)果酸代謝研究(一)

來(lái)源:鄭州天順食品添加劑有限公司 發(fā)布時(shí)間:2021-09-17 16:53:34 關(guān)注: 0 次
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火龍果屬仙人掌科三角柱屬,原產(chǎn)于墨西哥、中美洲和南美洲,因其健康特性和營(yíng)養價(jià)值受到重視而被廣泛種植。目前,市面上常見(jiàn)的火龍果品種主要有:白肉火龍果、紅肉火龍果和紫紅肉火龍果3種。其中,紅肉火龍果果肉中富含白肉火龍果所缺少的甜菜色素,還含有豐富的不飽和脂肪酸、水溶性食物纖維等。除了有較高的營(yíng)養價(jià)值外,紅肉火龍果在抗氧化方面對人體也有一定的輔助作用。

果實(shí)中有機酸的組成與含量是影響果實(shí)風(fēng)味品質(zhì)的重要因素。果實(shí)中存在許多種類(lèi)的有機酸,然而大多數果實(shí)通常以1種有機酸為主,少數以多種為主。根據主要有機酸的種類(lèi),可以將果實(shí)分為蘋(píng)果酸型果實(shí)、檸檬酸型果實(shí)和酒石酸型果實(shí)等。果實(shí)中的有機酸代謝是一個(gè)復雜的生理過(guò)程,由有機酸的合成和降解共同決定。有研究表明,蘋(píng)果酸是火龍果的主要有機酸。蘋(píng)果酸脫氫酶(NAD-MDH)、磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(PEPC)和蘋(píng)果酸酶(NADP-ME)是蘋(píng)果酸代謝中關(guān)鍵的3個(gè)酶,前兩者催化蘋(píng)果酸的合成,后者則參與蘋(píng)果酸的降解,它們共同調節了火龍果生長(cháng)發(fā)育過(guò)程中蘋(píng)果酸的代謝和積累,其含量是一個(gè)動(dòng)態(tài)變化的過(guò)程,可影響火龍果的風(fēng)味品質(zhì)。

目前關(guān)于紅肉火龍果中蘋(píng)果酸的代謝變化還未見(jiàn)研究報道。本試驗研究了“玫瑰香”品種和“大紅一號”品種火龍果貯藏過(guò)程中的品質(zhì)變化和蘋(píng)果酸代謝關(guān)鍵基因NADP-ME、PEPC和NAD-MDH的表達差異,為進(jìn)一步研究紅肉火龍果采后貯藏過(guò)程中蘋(píng)果酸積累的調控機制和對風(fēng)味特性形成的影響提供科學(xué)依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

1.1.1 材料

“玫瑰香”品種火龍果,采自浙江省江山市秋實(shí)家庭農場(chǎng);“大紅一號”品種火龍果,采自浙江省諸暨市雪鋒火龍果基地,保鮮車(chē)運回實(shí)驗室后置于10℃冷庫中預冷12h。

1.1.2 試劑

磷酸二氫鉀、磷酸、福林-酚等(分析純級),購自國藥集團化學(xué)試劑有限公司;色譜級甲醇、色譜級乙腈,購自美國迪馬科技公司;草酸、酒石酸、蘋(píng)果酸、乳酸、檸檬酸、富馬酸及琥珀酸標準品,購于阿拉丁試劑(上海)有限公司;異硫氰酸苯酯、三乙胺、游離氨基酸混標,購于美國Sigma試劑公司:PEPC測定試劑盒。購于南京建成生物工程研究所。

1.2 儀器與設備

TAXTPlus型質(zhì)構儀,英國SMS公司:PAL-1型手持折射儀,日本ATAG0公司;877Titrinoplus自動(dòng)電位滴定儀,瑞士萬(wàn)通股份有限公司;UV-9000紫外-可見(jiàn)分光光度計,上海元析儀器有限公司:Waters高效液相色譜儀(型號e2695-2998配有PDA檢測器),沃特世科技(上海)有限公司;微量分光光度計,日本SHIMADZY公司;恒溫擴增PCR儀,美國賽默飛世爾科技公司:微量核算蛋白測定儀,美國賽默飛世爾科技公司:The瑚oMR23i高速低溫冷凍離心機。法國捷安特集團股份有限公司。

1.3 試驗方法

挑選無(wú)機械損傷,果實(shí)大小和成熟度相對一致的“玫瑰香”火龍果和“大紅一號”火龍果。用2%次氯酸鈉浸泡消毒后自然晾干,于25℃恒溫培養,每組3次重復。分別在貯藏第0,1,2,3,4,5,6。7,8天定期取樣,置于液氮中迅速凍存,混合后分裝至樣品袋中,于-80℃保存。用于后續品質(zhì)指標測定。

1.3.1 硬度的測定

參考黃子娟的方法。并稍作修改。采用質(zhì)構儀測定火龍果的果皮硬度和果肉硬度,使用直徑2mm探頭(P/2型),選取火龍果果實(shí)無(wú)鱗片的赤道部位進(jìn)行穿刺測定,重復3次,取平均值,單位為N。

1.3.2 可滴定酸含量的測定

采用可滴定酸自動(dòng)電位滴定儀測定。果肉勻漿后過(guò)濾,取濾液1mL,用去離子水定容至100mL。以0.05mol/LNa0H溶液滴定,記錄滴定終點(diǎn)時(shí)所用堿溶液的體積,并計算可滴定酸含量,重復3次。

1.3.3 可溶性固形物含量的測

采用手持折射儀測定樣品可溶性固形物含量,重復3次。

1.3.4 維生素C含量的測定

參考吳媛媛等的方法。稱(chēng)取1g火龍果研磨樣,加入5%TCA溶液,混勻后離心。取上清液依次加入5%三氯乙酸、0.5%鄰菲羅琳-乙醇溶液、0.5%磷酸-乙醇溶液、0.03%三氯化鐵-乙醇溶液和1mL無(wú)水乙醇后于30℃水浴1h。用蒸餾水調零,以蒸餾水代替上清液為參比。在波長(cháng)534nm處測定吸光度值,重復3次,單位為mg/100g。

1.3.5 總酚含量的測定

采用福林酚比色法,參考范智義等的方法,并作適當修改。稱(chēng)取火龍果研磨樣1.0g,加入5.OmL60%乙醇浸提2h,10000×g離心15min,取上清液1mL至25mL具塞試管中,加入3mL1.0mol/L福林酚試劑后搖勻,靜置5min后加入6mL7.5%碳酸鈉,用蒸餾水定容至25mL。室溫下在暗處放置2h,以不加沒(méi)食子酸的樣品為空白,于波長(cháng)760nm處測定其吸光度值,重復3次,以沒(méi)食子酸含量為標準物測定總酚含量,單位為μg/g。

1.3.6 可溶性糖含量的測定

參考曹健康等的苯酚一硫酸法,并作適當修改。稱(chēng)取火龍果研磨樣1.0g,加入5。10mL蒸餾水后封口,于100℃水浴30min。冷卻后過(guò)濾。濾液移入100mL容量瓶,回收殘渣,加入5~10mL蒸餾水于100℃水浴10min后冷卻、過(guò)濾,合并濾液。取500μL樣品液于試管中。加入1.5mL蒸餾水和1.0mL9%苯酚,搖勻,在5~20s內加入5mL濃硫酸,搖勻,室溫下反應30min,以空白為參比,在波長(cháng)485nm處測定其吸光度值,重復3次。

1.3.7 有機酸組分的測定

1) 色譜條件

C18反相色譜柱(3.9mm×300mm,5μm);柱溫30℃;流動(dòng)相為0.04mg/LKH2PO4-H3P04緩沖溶液:甲醇=95:5(體積比);流速0.8mL/min;進(jìn)樣體積10μL;配有PDA檢測器,檢測波長(cháng)214nm;外標法定量。

2) 提取方法

用高效液相色譜法,參考關(guān)秀杰等的方法,并作適當修改。稱(chēng)取火龍果研磨樣5.0g于10mL容量瓶,加入一定量流動(dòng)相,于75℃水浴45min,冷卻至室溫,定容。渦旋2min,超聲提取15min,過(guò)濾分離蛋白質(zhì)等大分子物質(zhì)。取一定量濾液,離心10min后用0.45μm孔徑的濾膜過(guò)濾上清液,備用。

1.3.8 NAD-MDH和NADP-ME酶活的測定

1)酶液提取

參考Masashi等和Hirai等的方法,稍作修改。取5g火龍果研磨樣,加入10mL經(jīng)預冷的研磨緩沖液(包含10mmol/L異抗壞血酸、0.6mol/L蔗糖、0.2mol,LTris-HCl,pH8.2),低溫離心后取上清液。用pH8.2的提取緩沖液(包含10mm01/L異抗壞血酸、0.1%曲拉通X-100、0.2mol/LTris-HCl)定容到50mL,混勻后用提取緩沖液定容至100mL,酶液低溫保存備用。

2)酶活測定

NAD-MDH和NADP-ME酶活性測定參考Hirai等的方法。

1.3.9 PEPC酶活的測定

使用PEPC測定試劑盒測定樣品中PEPC的酶活。

1.3.10 總RNA提取及檢測

使用天根多糖多酚植物總RNA提取試劑盒提取火龍果總RNA。取1μLRNA通過(guò)核酸蛋白測定儀測定OD260/OD280比值檢驗RNA純度,用普通瓊脂糖凝膠電泳檢驗RNA完整性。

1.3.11 RT-qPCR分析

以總RNA為模版,采用諾維贊反轉錄試劑盒,在冰浴條件下進(jìn)行第1鏈cDNA的合成。

蘋(píng)果酸代謝相關(guān)基因引物(表1)通過(guò)Primer軟件自主設計,檢驗引物熔解曲線(xiàn)單一(無(wú)特異性產(chǎn)物)后,可用于實(shí)時(shí)熒光定量分析。

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